人胰岛素(INS)酶联免疫吸附测定试剂盒使用说明书
l该试剂盒用于体外定量检测人 血清、血浆或其他相关生物液体中INS的浓度。
实验原理:
本试剂盒采用双抗体夹心法酶联免疫吸附试验(ELISA)。往预先包被有人胰岛素(INS)捕获抗体的微孔中,依次加入样本、标准品、生物素标记的检测抗体,HRP酶结合物,中间经过温育和洗涤,用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶(HRP)的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的人胰岛素(INS)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),计算样品浓度。
试剂盒组成:
名称 | 96孔配置 | 48孔配置 | 备注 |
预包被96孔酶标板 Pre-coated Assay Plate | 8孔×12条 | 8孔×6条 | 无 |
标准品 Standard | 2支 | 1支 | 按说明书进行稀释 |
通用稀释液 Universal Diluent | 2x20mL | 1x20mL | 无 |
浓缩生物素化检抗100× Biotin-antibody (100×) | 120μL | 60μL | 按说明书进行稀释 |
浓缩酶结合物100× Streptavidin-HRP (100×) | 120μL | 60μL | 按说明书进行稀释 |
20×洗涤液 Wash Buffer (20×) | 2x10mL | 1x10mL | 按说明书进行稀释 |
底物(TMB) TMB Substrate | 10mL | 5mL | 无 |
终止液 Stop Solution | 6mL | 3mL | 无 |
封板膜 Plate Sealer | 4张 | 4张 | 无 |
说明书 Instruction Manual | 1份 | 1份 | 无 |
试剂盒参数:
性能 | |
灵敏度 | 0.076ng/mL |
检测范围 | 0.156-10ng/mL |
重复性 | 板内变异系数小于10%,板间变异系数小于10%。 |
特异性 | 可检测样本中人的INS,且与其类似物无明显交叉反应 |
需自备的设备及试剂:
1. 450±10nm 滤光片酶标仪
2. 高精度加样器及枪头:0.5-10uL、2-20uL、20-200uL、200-1000uL.
3. Eppendorf 移液器.
4. 蒸馏水或去离子水.
5. 脱脂棉吸水纸.
6. 37℃恒温箱.
8. 准备若干个标准品稀释管.
样本处理及要求:
1. 血清:将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2小时或4℃过夜,然后1000×g离心20分钟,取上清即可,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
2. 血浆:用EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8℃1000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
3. 组织匀浆:用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织,去除残留血液(匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果),称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比,比如1g的组织样品对应9mL的PBS,具体体积可根据实验需要适当调整,并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂)加入玻璃匀浆器中,于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融。最后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟,取上清检测。
4. 细胞培养物上清:请1000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
5. 其它生物标本:1000×g离心20分钟,取上清即可检测。
6. 样品外观:样品应清澈透明,悬浮物应离心去除。
7. 样品保存:样品收集后若在1周内进行检测的可保存于4℃,若不能及时检测,请按一次使用量分装,冻存于-20℃(1个月内检测),或-80℃(6个月内检测),避免反复冻融,标本溶血会影响最后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。
检测前准备工作:
1. 提前从冰箱中取出试剂盒,平衡至室温。
2. 标准品梯度工作液配制:加入1mL通用稀释液至冻干标准品中,静置15分钟待其溶解后轻轻混匀(浓度为10ng/mL),然后按照以下浓度:10ng/mL、5ng/mL、2.5ng/mL、1.25ng/mL、0.625ng/mL、 0.312ng/mL、0.156ng/mL、0ng/mL进行稀释。倍比稀释方法:取7支 EP管,每管中加入500μL通用稀释液,10ng/mL的标准品工作液中吸取500μL到第一支EP管中混匀配成5ng/mL的标准品工作液,按此步骤往后依次吸取混匀。最后一管直接作为空白孔,不需要再从倒数第二管中吸取液体,具体如下图。
3. 生物素化检抗工作液配制:使用前15分钟将浓缩生物素化抗体于1000×g离心1分钟,以通用稀释液将100×浓缩生物素化抗体稀释成1×工作浓度(例:10μL浓缩液+990μL通用稀释液),当日使用。
4. 酶结合物工作液配制:使用前15分钟将100x浓缩酶结合物于1000×g离心1分钟,以通用稀释液将100×浓缩HRP酶结合物稀释成1×工作浓度(例:10μL浓缩液+990μL通用稀释液),当日使用。
5. 1×洗涤液配制:取10ml 20×洗涤液到190ml蒸馏水中(从冰箱中取出的浓缩洗涤液可能有结晶,属于正常现象,可放置室温,轻摇均匀,待结晶溶解后再配置)。
操作步骤:
1. 从室温平衡10分钟后的铝箔袋中取出所需板条,剩余板条用自封袋密封放回4℃。
2. 加样:分别将样品或不同浓度标准品按照100μl每孔加入相应孔中,空白孔加入100μL通用稀释液。盖上封板膜后37℃温育1小时。(建议:将待测样本用通用稀释液低稀释1倍后再加入酶标板内测试。从而减少基质效应对测试结果的误差影响,最后计算样本浓度时需乘以对应的稀释倍数。所有的待测样本和标准品在检测中建议设立复孔)。
3. 加生物素化抗体:取出酶标板,弃去液体,不用洗涤。每孔直接加入生物素化抗体工作液100μL,盖上封板膜后37℃温育1小时。
4. 洗板:弃去液体,每孔加入300μL 1x洗涤液,静置1分钟,甩去洗涤液,吸水纸上拍干,如此重复洗板3次(也可用洗板机洗板)。
5. 加酶结合物工作液:每孔加入酶结合物工作液100μL,盖上封板膜后37℃温育30分钟。
6. 洗板:弃去液体按步骤4洗涤方法,洗板5次。
7. 加底物:每孔加入底物(TMB)90μL,盖上封板膜,37℃避光温育15分钟。
8. 加终止液:取出酶标板,每孔直接加入终止液50μL,立即在450nm波长处测定各孔的OD值。
结果判断:
1. 计算标准品和样本复孔的平均OD值并减去空白孔的OD值作为校正值。以浓度为横坐标,OD值为纵坐标,在双对数坐标纸上绘出四参数逻辑函数的标准曲线(作图时去掉空白组的值)。
2. 若样品OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测并在计算样本浓度时乘以相应的稀释倍数。
典型数据和参考曲线:
以下数据和曲线仅供参考,实验者需根据自己的实验建立标准曲线。
浓度(ng/mL) | 10 | 5 | 2.5 | 1.25 | 0.625 | 0.312 | 0.156 | 0 |
OD值 | 2.22 | 1.56 | 0.92 | 0.63 | 0.42 | 0.25 | 0.18 | 0.08 |
校正OD值 | 2.14 | 1.48 | 0.94 | 0.55 | 0.34 | 0.17 | 0.1 | - |
试剂盒性能:
1. 重复性:板内变异系数小于10%,板间变异系数小于10%。
2. 回收率:在选取的健康人血清、血浆和组织匀浆中加入3个不同浓度水平的人INS,计算回收率
样本类型 | 范围 | 平均回收率 |
血清(n=8) | 84-101 | 96 |
血浆(n=8) | 92-105 | 102 |
细胞培养上清(n=8) | 96-108 | 105 |
3. 线性稀释:分别在选取的4份健康人血清、血浆和组织匀浆中加入高浓度人INS,在标准曲线动力学范围内进行稀释,评估线性。评估线性。
稀释比例 | 回收率(%) | 血清 | 血浆 | 细胞培养上清 |
1:2 | 范围(%) | 84-95 | 88-96 | 90-110 |
平均回收率(%) | 91 | 93 | 96 | |
1:4 | 范围(%) | 89-103 | 87-108 | 105-115 |
平均回收率(%) | 94 | 98 | 108 |
注意事项:
1. 严格按照规定的时间和温度进行温育以保证准确结果。所有试剂都必须在使用前达到室温20-25℃。使用后立即冷藏保存试剂。
2. 洗板不正确可以导致不准确的结果。在加入底物前确保尽量吸干孔内液体。温育过程中不要让微孔干燥掉。
3. 消除板底残留的液体和手指印,否则影响OD值。
4. 底物显色液应呈无色或很浅的颜色,已经变蓝的底物液不能使用。
5. 避免试剂和标本的交叉污染以免造成错误结果。
6. 在储存和温育时避免强光直接照射。
7. 平衡至室温后再打开密封袋以防水滴凝聚在冷板条上。
8. 任何反应试剂不能接触漂白溶剂或漂白溶剂所散发的强烈气体。任何漂白成分都会破坏试剂盒中反应试剂的生物活性。
9. 不能使用过期产品。
10. 如果可能传播疾病,所有的样品都应管理好,按照规定的程序处理样品和检测装置。